urocultivo

UROCULTIVO

La finalidad del urocultivo es aislar , numerar e identificar los M. O. que puedan existir en el tracto urinario causando muchas beses daño irreversible con consecuencias como hipersensibilidad , uremia , etc.

PARAMETROS A CONSIDERAR EN EL ANALISIS

EXAMEN FICICO

- COLOR : amarillo a ámbar
- ASPECTO : transparente –ligeramente turbio – turbio
-
EXAMEN QUIMICO

Se realiza mediante tiras reactivas para la determinación rápida de PH. Densidad, proteínas, bilirrubina, cetonas, nitritos , glucosa, urobilinogeno, leucocitos y sangre.
Para la prueba , se introduce la tira reactiva en la muestra de orina y se lee entre 30 y 60 segundos la lectura se realiza en la cartilla de interpretación de colores

EXAMEN MICROSCOPICO

La muestra debe ser previamente centrifugada a 2500 rpm x 3-5 minutos , efectuar luego una observación microscopica del sedimento anotando los sgntes elementos : celulas epiteliales , leucocitos (piocitos ) ,hematíes , flora bacteriana , levaduras , cristales y algunas beses parasitos . la observación microscopica se realiza primero con el objetivo de menor aumento y luego se pasa al de mayor aumento (10x y 40x ) con la finalidad de informar la lectura por campo , además es importante señalar en el informe el aumento con el cual se a realizado la observación del sedimento

AISLAMIENTO Y CULTIVO

Una ves recolectadas las muestra según los metodos señalados las muestras son inoculada directamente en placas conteniendo agar sangre y agar mac conkey el sembrado se realisa por estria simple para ello con un asa de siembra esterilisada se coge una pequeña cantidad de muestra de orina y se coloca sobre el medio esparciéndolo suavemente a manera de zig – sag terminado el sembrado se debe tapar la placa e incubar a 37°c x 24- 48 hras paralelamente se debe de efectuar la preba de bacillus subtilis para la deteccion de medicamentos y contoles , para lo untimo se utilisa placas de cutivo de agar tryplicasa soya o miuller hinton

CONTROL E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Al termino de la incubacion se seleccionan las colonias sospechosa en las placas de agar mac conkey ( las colonias sospechosas de las placas de agar sangre son seleccionadas para realisar la coloracion Gram ) para realizar la diferenciación bioquímica en los medios de TSI , LIA , SIM ,CITRATO DE SIMONS , Y UREA ,pasado las 24 hras de incubacion a 37°c se efectua las lecturas utilizando la tabla de diferenciación para enterobactrias los medios antes mencionados son utisados cuando el m.o. a identificar es una enterobacteria pero si se tratase de otros m.o. se debe de hacer uso de otras pruebas como el test de oxidasa ,catalasa , coagulasa para el caso de estafilococos y coloracion Gram finalmente see procede a efectuar el antibiograma respectivo .

COPROCULTIVO

La finalidad del coprocultivo es determinar el pronostico del agente etiologico causal de las infecciones intestinales producidos por lo general por m.o. del genero de las enterobacterias no por ello se descarta a otros m. o. como estafilococos productores de enterotoxinas , estreptococos , clostridios , ,et casi como tambien virus , hongos y parasitos .

AISLAMIENTO Y CULTIVO

Obtenida la muestra según los metodos señalados la muestra debe ser prosesada en el menor tiempo posible utilizando para ello una torunda de algodón o una ansa de kolle , se debe sembrar mas o menos 1 gm. De muestra en los medios de enriquecimiento (caldo selenito ) escogiendo de preferencia las porciones que presentan mucosidad y sangre paralelamente se debe sembrar en placas con agar s.s. , xld , mac conkey este ultimo con la finalidad de aislar Escherichia coli EPI muy comun en diarreas infantiles , los medios sembrados se incuban a 37°c por 24- 48 hrs .

LECTURA E INTERPRETACION DE LOS RESULTADOS

Al termino de la incubacion se seleccionan la colonias sospechosas en las placas de agar salmonella shiguella y Mac conkey , de los caldos sembrados se replican en los mismos medios señalados , se ara énfasis en la busqueda de colonias pequeñas no fermentadoras de lactosa a excepción de la E. coli EPI que si fermenta la lactosa y presenta las mismas caracteristicas morfologicas de una E. coli componente normal de la flora intestinal la unica forma de identificar este m. o. es por serologia , las colonias seleccionadas se suspende en una gota de suero OB polivalente colocada en un portaobjeto , se homogeniza y se agita por vaivén , obserbar si se presenta aglutinación o no sobre un fondo oscuro , otras colonias sospechosa son seleccionadas para su identificación bioquímica en los medios : TSI, LIA , SIM , CITRATO DE SIMONS Y UREA al termino de las 24 hrs de incubacion a 37°c se efectua las lecturas utilizando la tabla de interpretación para enterobacterias .
Para el aislamiento de salmonella y shiguella se utilisa el medio de cultivo XLD la siembra debe ser directa y lo mas fino posible a fin de obtener colonias aisladas en medio XLD el crecimiento de salmonella se presenta como colonias rojas muchas beses con el centro de la misma de color negro , para el caso de estafilococos patogenos se hace uso del manitol salado (inhibe el crecimiento de la flora intestinal garm negativa ) en el cual se desarrollan colonias doradas rodeadas de un alo amarillo por fermentación del azucar asi mismo de manera obcional se puede inbestigar Andida albicans Mycobacterium tubeculosis y V. cholerae por lo tanto un examen de materia fecal no lleba a determinar existencia de transtornos de la digestión , alteración en la pared gastrica e intestinal y la existencia de parasitos y m. o. patogenos , previamente es necesario efectuar un examen macroscopico suspendiendo la muestra en solucion fisiológica y en una placa petri inclinando esta se podra apreciar si hay moco , restos alimenticios , pus , restos o parasitos adultos , etc posteriomente se debe efectuar una observación microscopica de un prparado en una lamina portaobjeto con solucion de lugol y salina ebaluando la existencia de polimorfonucleares y piocitos estos indican la existencia de inflamación o infeccion encabio si las heces son diarreicas pero que en el examen microscopico no se obeserban muchos polimorfonucleares ni piositos puede tratarse de trastornos de origen alimenticio y no necesariamente de origen bacteriano .

CULTIVO DE SECRECIÓN VAGINAL

Obtenida la muestra se porosede a efectuar una observación microscópica en fresco pudiendo encontrar en algunos casos los siguientes elementos : ululas epiteliales , levaduras , leucocitos , tricomonas , piocitos , hematíes Bacilo de dobarlein y otra flora bacteriana , el examen microscopico es de singular importancia ya que da una idea bastante amplia sobre el posible agente etiologico , este debe ser informado al clinico acompañado con el respectivo aislamiento y antibiograma

AISLAMIENTO Y CULTIVO

Las muestras son tomadas por el medico (la muestras llegan al sebicion en un bial en cuyo interior se encuentra la mx tomada en un hisopo de algodón ), ants de proceder al procesamiento de la muestra se debe suspender la muestra una pequeña catidad de solucion salina esteril luego con un hisopo de algodón esteril u un asa de kolle se debe inocular la muestra en placas de agar sangre , chocolate , mac conkey y tayer marti (en el caso de sospecha de Neiseria gonorreae ) luego se incuban en camara anairobia (en el interior de la jarra de incubacion se debe colocar una bela encendida con la finalidad de reducir la concentración de oxigeno y aumentar la concentración ce CO2) a 37°c por 24 hrs a excepción de la placa de agar mac conkey .

CULTIVO DE SECRECION FARINGEA

Las muestras de secrecion faringea son tomadas en el serbicio con un hisopo de algodón para ello el pasiente no debe haber ingerido ningún antibacteriano ni haberse labado la boca una ves obtenida la muestra se debe de realisar un examen directo con la coloracion Gram ,paralelamente las muestras de deben inocular en placas de agar sangre , chocolate , tayer martin ,mac conkey y manitolsalado para identificar estafilococos , los medios sembrados son incubados a 37°c en anaerobiosis con CO2 por 24 hrs

AREA DE INMUNOLOGIA





PROEINA C REACTIVA
Basada en la reacción inmunológica entre el anticuerpo anti PCR unido a partículas de látex biológicamente inertes y el PCR presente en la muestra de suero a estudiar cuando el suero contenga mas de 0.8 mg /dl el PCR se une a las partículas de látex ocurriendo una ración visible de aglutinación.
TECNICA
PRUEBA CUALIATIVA
*los reactivos y los sueros deben estar a temperatura ambiente
*comparar la funcionalidad del reactivo mediante los controles positivo y negativo
*colocar 35 ul de suero apartir del campo Nº 3
*homogenizar el reactivo de PCR y colocar 20 ul en cada campo utilizado de la tarjeta, homogenizar en todo el campo de reacción y rotar la lamina por 3 minutos
*inmediatamente después leer los resultados sobre una fuente de luz directa.
INTERPRETACION
POSITIVO: presencia de aglutinación
NEGATIVO: suspensión lechosa uniforme no hay aglutinación
PRUEBA SEMICUANTITATAIVA
*marcar 5 tubos de prueba con las diluciones siguientes: 1/2 , 1/4 ,1/8 ,1/16 ,1/32 , etc.
*diluir la muestra de acuerdo al factor de dilución de cada tubo con ClNa al 0.9 %
*Colocar 1 gota de control negativo y positivo en los campos de reacción sucesivos
*homogenizar el reactivo PCR y agregar una gota sobre cada campo usado
*mezclar sobre todo el campo de reacción y rotar la lamina por 3 minutos
*leer los resultados sobre una fuente de luz directa. ) El titulo corresponderá a la máxima dilución que de un resultado positivo

INTERPRETACION
POSITIVO: presencia de aglutinación
NEGATIVO: suspensión lechosa uniforme no hay aglutinación


COMBRCION DE CONCENTRACIONES
1/1 0.8 mg / dl
1/2 1.6 mg / dl
1/4 3.2 mg /dl
1/8 6.4 mg/dl

FACOR REMATOYDEO (FR)
TECNICA
MTODO CUALITATIVO
*los reactivos y los sueros deben estar a temperatura ambiente
*comparar la funcionalidad del reactivo mediante los controles positivo y negativo
*colocar 35 ul de suero a partir del campo Nº 3
*homogenizar el reactivo (FR) y colocar 20 ul en cada campo utilizado de la tarjeta , homogenizar en todo el campo de reacción y rotar la lamina por 4 minutos
*inmediatamente después leer los resultados sobre una fuente de luz directa.
POSITIVO: presencia de aglutinación
NEGATIVO: suspensión lechosa uniforme no hay aglutinación

MEODO SEMICUANTITATIVO
*marcar 5 tubos de prueba con las diluciones siguientes: 1/2, 1/4 ,1/8 ,1/16 ,1/32, etc.
*diluir la muestra de acuerdo al factor de dilución de cada tubo con ClNa al 0.9 %
*Colocar 1 gota de control negativo y positivo en los campos de reacción sucesivos
*homogenizar el reactivo de FR y agregar una gota sobre cada campo usado
*mezclar sobre todo el campo de reacción y rotar la lamina por 3 minutos
*leer los resultados sobre una fuente de luz directa. ) El titulo corresponderá a la máxima dilución que de un resultado positivo

INTERPRETACION
POSITIVO: presencia de aglutinación
NEGATIVO: suspensión lechosa uniforme no hay aglutinación

COMBRCION DE CONCENTRACIONES
1/1 0.8 mg / dl
1/2 1.6 mg / dl
1/4 3.2 mg /dl
1/8 6.4 mg/dl

REGAIN PLASMATICA RAPIDA (RPR)
MEODO CUALIATIVO

MTODO CUALITATIVO
*los reactivos y los sueros deben estar a temperatura ambiente
*comparar la funcionalidad del reactivo mediante los controles positivo y negativo
*colocar 1 gota de suero a partir del campo Nº 3 de la tarjeta de reacción
*homogenizar el reactivo RPR y colocar 17 ul de suspensión de carbón en cada campo utilizado de la tarjeta mezclar las 2 gotas por agitación y extenderlos por todo el circulo *rotar la tarjeta de reacción por 8 minutos
*inmediatamente después leer los resultados sobre una fuente de luz directa. Tiempos mayores dan lugar a falsos resultados
POSITIVO: presencia de floculación
NEGATIVO: suspensión lechosa uniforme no hay floculación

MEODO SEMICUANTITATIVO
Siguiendo con la metódica cualitativa se procederá con diluciones de las muestras con solución salina (ClNa) el titulo corresponderá a la máxima dilución que de un resultado positivo.
REPORTE DE RESUTADOS

1/2 positive 2 dilutions 1/4 positivo 4 dilutions
1/8 positivo 8 dilutions
1/16 positivo 16 dilutions
1/32 positivo 32 dilutions

ANTIESREPTOLICYNA “O” (ASO)
MTODO CUALITATIVO
*los reactivos y los sueros deben estar a temperatura ambiente
*comparar la funcionalidad del reactivo mediante los controles positivo y negativo
*colocar 35 ul de suero a partir del campo Nº 3 de la tarjeta de reacción
*homogenizar el reactivo ASO y colocar 20 ul del reactivo en cada campo utilizado de la tarjeta mezclar por agitación y extender por todo el circulo
*rotar la tarjeta de reacción por 4 minutos
*inmediatamente después leer los resultados sobre una fuente de luz directa. Tiempos mayores dan lugar a falsos resultados
POSITIVO: presencia de aglutinación
NEGATIVO: suspensión lechosa uniforme no hay aglutinación

MEODO SEMICUANTITATIVO
Siguiendo con la metódica cualitativa se procederá con diluciones de las muestras con solución salina (ClNa) el titulo corresponderá a la máxima dilución que de un resultado positivo.

COMBRCION DE CONCENTRACIONES
1/1 200 ui/ml
1/2 400 ui/ ml
1/4 800 ui/ml
1/8 1600 ui/ml
AGLUINACION EN LAMINA (AGLUTINACIONES FEBRILES)
*En una lamina de vidrio transparente colocar 5 gotas de suero problema (pte.) de 40 ul cada una
*agrega 1 gota de anti -suero en el sgnte. Orden: “O” , “H” ; “A” ; “B” , Brusela
* Homogenizar y rotar la lamina por 4 minutos
* leer inmediatamente
POSITIVO: hay aglutinación
NEGAIVO: no hay aglutinación
METODO SEMICUANTITATIVO
*sobre la lamina colocar 5 gotas en el sgnte. Orden: 80 ul, 40 ul, 20 ul, 10 ul, y 5 ul
*agregar 1 gota de cada anti suero en el sgnte. Orden: “O”, “H”, “A”, “B” y Brusela
*homogenizar y rotar la lamina por 4 minutos. Y leer.
REPORE DE RESULADOS PARA ANTIGENOS FEBRILES
1/20 80 ul
1/40 40 ul
1/80 20 ul
1/160 10 ul
1/320 5 ul

REPORE DE RESULADOS PARA BRUSELA

1/25 80 ul
1/50 40 ul
1/100 20 ul
1/200 10 ul
1/400 5 ul
DEERMINACION DE HCG – B
MEODO CROMATOGRAFICO
Basado en la migración capilar realizada en una membrana de nitrocelulosa como soporte en la que se encuentran adheridos los anticuerpos específicos. Para la prueba se debe introducir la tira reactiva de prueba en la muestra de orina, eliminar el exceso de orina y leer el resultado apartir del minuto, de encontrarse HCG – B en la muestra de orina el sistema rebelara una reacción de color apreciable a simple vista.
METODO DE ELISA PARA HCG - B
Basado en el inmunoensayo de sándwich
TECNICA
*dispensar 50 ul de control positivo y negativo ,25 ul de muestra problema, 100 ul de conjugado enzimático a cada pocillo
*mezclar por 10 segundos e incubar por 30 minutos a TA°
*lavar por 5 beses con H2od
*agregar 50 ul de substrato “A” y 50 ul de substrato “B”
*incubar por 5 minutos a ATS
*agrega 50 ul de solución stop y leer a 450 nm dentro de los 15 minutos
POSITIVO: color azul – amarillo al agregar la sol. Stop
NEGATIVO: incoloro

ELISA PARA HBsAg
Basado en el método inmuno enzimático directo de tipo sándwich
TECNICA
dispensar 100 ul de control positivo , negativo , y muestras problema
incubar por 1 hora a 37°c
lavar por 4 beses con solución wash
agrega 100 ul de conjugado enzimático a cada pocillo
incubar por 30 minutos a 37°c
lavar por 4 beses con solución wash
agrega 100 ul de substrato a cada pocillo
incubar por 30 minutos a TA°
agrega 100 ul de solución stop a cada pocillo
leer a 450 nm.
POSITIVO: color amarillo
NEGATIVO: incoloro
VALIDACION DE LA PRUEBA
*Calcular en VU añadiendo 0.040 a la media ce controles negativos

VALOR UMBRAL = CN + 0.040
*dividir la absorbancia de la muestra x el valor umbral
POSITIVO: > O = 1.0 de absorbancia
NEGATIVO: < 0.9 de absorbancia
DUDOSO O INDETERMINADO: > o = 0.9 < 1.0 de absorbancia (repetir el ensayo)
DETERMINACIÓN DE TSH
TECNICA
dispensar 50 ul de control positivo , negativo , y muestras problema 100 ul de conjugado mezclar y cubrir
incubar por 1 hora a TA°
lavar por 5 beses con solución wash
agrega 100 ul de substrato a cada pocillo
incubar por 15 minutos a TA°
agrega 100 ul de solución stop a cada pocillo
leer a 450 nm.
DETERMINACION DE T3 Y T4
TECNICA
dispensar 25 ul de control positivo , negativo , y muestras problema
agregar 100 ul de conjugado preparado
incubar por 1 hora a TA°
lavar por 5 beses con solución H2od
agrega 100 ul de substrato TMB a cada pocillo
incubar por 20 minutos a TA°
agrega 100 ul de solución stop a cada pocillo
leer a 450 nm.
DETERMINACION DE FERRITINA
TECNICA
dispensar 20 ul de estándar control positivo , negativo , y muestras problema
agregar 100 ul de conjugado preparado , mezclar
incubar por 45 minutos a TA°
lavar por 5 beses con solución H2od
agrega 100 ul de substrato TMB a cada pocillo
incubar por 20 minutos a TA°
agrega 100 ul de solución stop a cada pocillo
leer a 450 nm.
DETERMINACION DE ANTIGENO PROSTATICO (PSA)
ECNICA
dispensar 50 ul de estándar , muestras problema y buffer
incubar por 1 hora a TA°
lavar por 5 beses con solución H2od
agregar 100 ul de conjugado preparado , mezclar
incubar por 1 hora y lavar por 5 beses

agrega 100 ul de substrato TMB reagent a cada pocillo
incubar por 20 minutos a TA°
agrega 100 ul de solución stop a cada pocillo
leer a 450 nm
los resultados de las lecturas deben llevarse a la curva de calibración


SERBICIO DE PARACITOLOGIA

EXAMEN FISICO

CONSISTENCIA: diarreica, pastosa, semisólida, desinterica
COLOR: pardo, blanquecina , amarillo, etc.
OTRAS COSIDERACIONES : sangre oculta, presencia de mucus y restos de parásitos
EXAMEN PARACITOLOGICO
Comprende montaje de lamina en fresco, sedimentación espontánea en tubo, método Faust Bearman, Wilis, Kato coloración Ziehl Nelzeen, y el test de graham. Los métodos barrían de acuerdo a lo que se desee investigar, la finalidad del examen parasicológico es apreciar la presencia de huevos, lavas, quistes, trofozoitos y abecés la presencia de individuos adultos.
REACCION INFLAMATORIA
Es el examen directo en fresco se pueden observar: polimorfonucleares (infección bacteriana) y mononucleares (infección viral) además se pueden observar hematíes, grasas almidones, etc.
EXAMEN DIRECTO CON SOLUCION DE LUGOL Y SALINA
Se observan leucocitos, hematíes, levaduras, restos vegetales y parásitos.
TECNICA
rotular una lamina porta objetos
colocar una gota de cada reactivo en cada extremo de la lamina por separado
con una bagueta colocar una pequeña cantidad de la muestra (se debe buscar de preferencia la porción que contenga mucosidad)en cada una de las gotas de reactivo homogenizar bien
cubrir con una laminilla a cada una de la s preparaciones y observar al microscopio con 10x y 40x
TEST DE GRAHAM
Se utiliza principalmente para la observación de huevos de oxiuros ,para la prueba el día anterior se debe entregar al paciente o al familiar del mismo dos laminas porta objetos con una cinta adhesiva a cada lamina con las respectivas recomendaciones válidas para la prueba se debe indicar al paciente que antes de acostarse o en la mañana deberá de realizar enfrontas de esfínter anal en todo el diámetro de la cinta adhesiva luego deberá de pegar la cinta a cada lamina además deberá de rotular con su nombre completo y envolverlo en un papel limpio y remitirlo al laboratorio para su posterior estudio .
SEDIMENTACION EXPONTANIA EN TUBO
Basada en la gravidez de los parásitos en un medio denso como la solución salina se observan parásitos, trofozoitos así como huevos y larvas de helmintos
TECNICA
*en un tubo tomar una porcino de heces (2-3 gms) y homogenizar con suero fisiológico
*colocar una gasa en la boquilla del tuvo y sujetarla con una liga y filtrar el homogenizado a través de la gasa a otro tuvo limpio
*agregar suero fisiológico hasta un centímetro por debajo del borde del tuvo
*agitar enérgicamente y dejar reposar por 30-45 minutos en el caso que el sobrenadante sea muy turbio repetir el procedimiento dos a tres veces mas
* una vez que el sobrenadante este limpio decantar el sobrenadante y aspirar del fondo del sedimento con una pipeta y realizar dos preparaciones una con solución salina y otra con lugol cubrir cada preparación con una laminilla y observar al microscopio con 40x.
METODO DE FAUST.- se observan quistes y parásitos
TECNICA
*en un tuvo de ensayo colocar 1-3 grs. de heces y homogenizar con agua destilada
*colocar en el tubo 2 un embudo con gasa y filtrar la muestra homogenizada
*retirar el embudo y homogenizar a 2000 rpm por minuto por 2 minutos
*decantar el sobrenadante y repetir la operación 1-2 beses mas hasta que el sobrenadante este completamente limpio
*eliminar el sobrenadante y agregar 4 ml de sulfato de zinc homogenizar y completar hasta 1 cm. Por debajo del borde del tuvo
*colocar el tuvo en una gradilla y agregar sulfato de zinc hasta formar un menisco en la superficie del tuvo
*colocar una laminilla y dejar reposar por 5 minutos
*retirar la laminilla y colocarlo en una lamina porta objeto y observar al microscopio con una gota de lugol con 40x
METODO WILIS
Técnica de flotación para quistes y huevos se utiliza suero fisiológico y lugol para la observación.
TECNICA
*colocar en un tuvo 2 grs. de muestra y agregar suero fisiológico para homogenizar
*completar con suero fisiológico hasta el borde del tuvo y colocar una laminilla, dejar reposar por 10 minutos
*retirar la laminilla y colocarlo en un porta objetos con una gota de lugol y observar al microscopio con 40x
la idea de este método es que los quistes y huevos de menor peso que la solución floten en la superficie aumentando así la probabilidad de encontrar quistes y huevos de poco peso .
THEVENO (sangre oculta en heces)
Los hematíes presentes en la muestra son lizados al agregar ácido acético produciendo la liberación de la peroxidasa, luego la peroxidasa desdobla al H2O2 produciendo la liberación se O2, el O2 liberado oxida al piramidon formándose así un alo violeta en la interfase.
TECNICA
*en un tubo de ensayo colocar 1 gr. de muestra de heces y 1 ml de H2O para homogenizar
*agregar 5 gotas de ácido acético al 10% y homogenizar
*agrega 1 ml de piramidon en zona y mezclar
*agregar 5 gotas de agua oxigenada en zona y dejar reposar por 3 minutos
LECTURA
POCITIVO: presencia de un alo violeta en la interfase
NEGATIVO: ausencia del alo
METODO DE BEARMAN
Basado en el tropismo de los trofozoitos y larvas de helmintos valido para el diagnostico de Balantidium Coli y larvas de helmintos
TECNICA
*colocar una coladera con gasa sobre la copa cónica y colocar solución salina a 37°c hasta que choque la superficie de la copa
*agregar la muestra de heces (4-5 grs.) y homogenizar dejar reposar a temperatura ambiente por 50 minutos
*sacar la coladera y con una pipeta sacar una gota del sedimento y realizar un montaje y observar al microscopio con 40x.

SERVICIO DE URIANALISIS
El objetivo del servicio de urianalisis es detectar o determinar alguna posible patología de acuerdo al resultado obtenido en el examen de rutina de orina completa y el diagnostico presuntivo del medico: comprende examen físico, examen químico y el examen microscópico del sedimento.
El análisis comienza con la recepción de la muestra, seguido por registro en el cuaderno y finaliza con el procesamiento de las muestra.
PARAMETROS A CONSIDERAR EN EL EXAMEN
EXAMEN FISICO
*VOLUMEN: se toma encuenta: poliuria, oliguria, nicturia, y anuria
*ASPECTO: transparente – ligeramente turbio – turbio
*DESIDAD: se realiza mediante el urodencimetro o mediante tiras reactivas (1010 - 1025)
*REACCION DE PH.- se utiliza papel indicativo que al introducirlo en la orina vira a un color determinado correspondiente a un valor de PH de acuerdo a una cartilla comparativa de colores también se realiza mediante tiras reactivas.
EXAMEN QUIMICO el examen químico de la orina se realiza mediante tiras reactivas para la detección lapida de Hb , urobilinogeno , proteínas , bilirrubina , nitritos , cetonas , glucosa , sangre y leucocito además PH y la densidad en orina . Pudiendo verificarse cualquier hallazgo con pruebas confirmatorias los resultados se leen después de 30 segundos después de haber introducido la tira en la muestra la orina no debe tener mas de 2 hras de reposo tiempos mayores pueden dar resultados equivocados.
EXAMEN MICROSCOPICO
Los sedimentos deben examinarse antes de las 4 horas posteriores a la obtención de la muestra.
PROSEDIMIENTO
*mezclar la muestra de orina y colocar 10 ml en un tuvo de prueba y centrifugar a 2500 rpm por minuto por 3-5 minutos
*retirar el tubo de la centrifuga y decantar el sobrenadante y resuspender el sedimento dando golpes suaves sobre la mesa
*colocar una gota en una lamina posta objeto , cubrir con una laminilla sin formar burbujas y observar al microscopio con 10x y 40x utilizando luz amortiguada para dar un contraste adecuado esto se logra serrando parcialmente el iris del diafragma y ajustando el condensador hacia abajo hasta lograr un contraste optimo , si hay demasiada luz algunas estructuras no se aprecian .
ELEMENTOS ENCONTRADOS

*CELULAS EPITELIALES: pueden ser escamosas, tubulares y de transición se reporta como: escasas, regular cantidad y abundantes.
*LEUCOCITOS (0-4 x c): se pueden observar la presencia de leucocitos aglutinados , forman también lo llamados cilindros leucocitarios.
*HEMATIES (0-2 xc): forman los cilindros hematicos.

*CILINDROS.- se encuentran en orinas patológicas y se reportan por cruces
-cilindros hialinos
-cilindros grasos
-cilindros granulosos
*CRISTALES (orinas ácidas)
-cristales de ácido úrico
-oxalato de calcio
-sulfato de calcio
-uratos de sodio
-tiroxina
-uratos amorfos
ORINAS ALCALINAS
-fosfatos triples
-fosfatos amorfos
-fosfatos de calcio
-cistina

*OTRAS ESTRUCTURAS
-PARACITOS: trichomononas vaginales se informa la motilidad.
-BACTERIAS: cocoides o vacilares se reportan en cruces .
-HONGOS: hifas, levaduras, pseudo hifas, se reportan en cruces.
-espermatozoides, filamentos mucoides, etc.